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產品名稱:

結核桿菌(TB)熒光PCR核酸擴增檢測試劑盒

產品型號: 產品時間: 2023-07-05
結核桿菌(TB)熒光PCR核酸擴增檢測試劑盒適用于檢測咽拭子標本等樣本中的結核桿菌,用于結核桿菌感染的輔助診斷,其檢測結果僅供參考。
本試劑盒用一對結核桿菌特異性引物,結合一條特異性探針,用熒光 PCR 技術對結核桿菌的核酸進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

產品概述

結核桿菌(TB)熒光PCR核酸擴增檢測試劑盒說明書

【產品名稱】

通用名稱:結核桿菌(TB)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR法)

Name  :Tubercle Bacillus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規格】48T/盒

【預期用途】

4.1結核病是由結核桿菌(Tubercle bacillus, TB)引起的傳染性疾病,可累及全身多個器官,但以肺結核為常見。據世界衛生組織報道,*有超過三分之一的人口被致病菌結核分枝桿菌所感染,其中約10%的人們在其有生之間將面臨活動性結核病的困擾[1]。而在這些結核病患者中,每年有200萬人喪生。雖然有抗菌藥物,但其療程至少要6個月,且花費巨大,由于經濟等原因而常常使患者無以為繼[2]。本試劑盒適用于檢測人氣管分泌物拭子、肺組織等樣本中的結核桿菌,用于結核桿菌感染的輔助診斷。

 

【檢驗原理】

本試劑盒采用TaqMan探針法實時熒光PCR技術,設計一對結核桿菌特異性引物,結合一條特異性探針,用熒光PCR技術對結核桿菌的核酸進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

 

【試劑組成】

名      稱   規      格

核酸提取液           1.5mL×2管

酶液        50μL×1管

TB反應液       1.0mL×1管

TB陽性質控品       50μL×1管

陰性質控品      250μL×1管

注:

1)不同批號試劑不能混用。

2)試劑盒內各試劑組份足夠包裝規格所標示的檢測次數。

 

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過5次,有效期12個月。

 

【適用儀器】

ABI 、安捷倫MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf等系列熒光定量PCR檢測儀。

 

【標本采集】

    無菌采集人肺病變部位或病變/非病變部位交界處的樣品;或用滅菌棉拭子沾取人氣管分泌物,放入無菌試管中。

 

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過6個月,標本運送應采用2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。

 

【使用方法】

1.樣品處理(樣本處理區)

1.1樣本前處理

組織樣品:每份組織分別從3個不同的位置稱取樣品約1g,手術剪剪碎混勻后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中;氣管分泌物取100μL提取。

 

1.2DNA提取

1)對上述處理好的標本加入等體積核酸提取液(固體標本加入50μL核酸提取液),100℃恒溫處理10min,13,000 rpm離心5min,取上清液轉移至新的1.5mL EP管,-20℃保存;

2)DNA的提取也可以采用上海晅科生物科技股份有限公司生產的DNA提取試劑盒(離心柱提取法),請嚴格按照試劑盒說明書進行操作。

 

2.試劑配制(試劑準備區)

根據待檢測樣本總數,設所需要的PCR反應管管數為N(N=樣本數+1管陰性對照+1管陽性對照;樣品每滿7份,多配制1份),每測試反應體系配制如下表:

試劑 TB反應液 酶液

用量(樣本數為N) 20μL 1μL

將混合好的測試反應液分裝到PCR反應管中,21uL/管。

 

3.加樣(樣本處理區)

將步驟1提取的DNA、陽性質控品、陰性質控品各取4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

 

4.PCR擴增(核酸擴增區)

4.2將待檢測反應管置于熒光定量PCR儀反應槽內;

4.3設置好通道、樣品信息,反應體系設置為25μL;

熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI系列儀器請勿選擇ROX參比熒光,選擇None即可。

4.4推薦循環參數設置:

步驟 循環數 溫度 時間 收集熒光信號

1 1 cycle 95℃ 10min 否

2 40 cycles 94℃ 15sec 否

55℃ 30sec 是

 

5.結果分析判定

5.1結果分析條件設定

設置Baseline和Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節Baseline的start值(一般可在3~15范圍內調節)、stop值(一般可在5~20范圍內調節),以及Threshold的Value值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

 

5.2結果判斷

陽性:檢測通道Ct值≤35.0,且明顯的擴增曲線。

可疑:檢測通道Ct值>35.0,且出現明顯曲線的樣本建議重復試驗,重復試驗結果如果同樣出現Ct值≤35.0和明顯擴增曲線則為陽性,否則為陰性。

陰性:樣本檢測結果無Ct值且無明顯的擴增曲線。

 

6. 檢測方法的局限性

1)樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

2)樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

3)陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

4)病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

5)不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

6)試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;

7)本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

 

7.質控標準

陰性質控品:無明顯擴增曲線或無Ct值顯示;

陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且Ct值≤32;

以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

 

【注意事項】

1.所有操作嚴格按照說明書進行;

2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心;

3.反應液應避光保存;

4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區工作服;

6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。

 

【參考文獻】

Ø[1] Anon, W. H. O. (2006). Global Tuberculosis Control, Surveillance, Planning, Financing. Geneva: WHO, 1-242.

Ø[2] Russell, D. G. (2007). Who puts the tubercle in tuberculosis? Nat Rev Microbiol 5, 39-47.

 

公司優勢:
1)質量:我司提供的的試劑為世界
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